血培养(Blood Culture)是血流感染诊断的金标准，是把静脉穿刺获得的血液接种到一个或多个培养瓶或培养管中，识别、鉴定其中病原菌的过程。血培养是临床微生物实验室较重要的检测项目之一，在无菌部位微生物的检测中广泛应用。由于血培养在血流感染中起到关键性作用，同时容易受到皮肤表面定植菌的污染，因此，了解血培养是什么，何时采，怎么采，采多少非常重要，本文带你详细了解。

一、血培养采集指征。

可疑感染患者出现以下一种或几种特征时，可以考虑采集血培养：

1)发热(≥38℃)或低温(≤36℃)；

2)外周血白细胞计数增多(≥10.0×109/L，特别有“核左移”时)，或减少(＜4.0×109/L)；

3)寒战；休克；皮肤黏膜出血；关节疼痛；

4) 血压降低；心率>90次/min；呼吸频率>20次/min或动脉血二氧化碳分压(PaCO2)<32mmHg；

5) 昏迷；多器官衰竭；

6) 炎症反应参数如C反应蛋白、降钙素原(PCT)、1,3-β-D-葡聚糖(G试验)升高等。

摘自WS/T503-2017临床微生物实验室血培养操作规范

二、血培养采集时机

1)寒战或发热初起时采血；

2)尽量在使用抗菌药之前采血或者在下次使用抗生素之前；

3)可疑急性心内膜炎应立即采集血培养，宜在经验用药前30min内不同部位采集2～3套血培养；

4)可疑亚急性心内膜炎宜间隔0.5～1h采集1套，不同部位共采集3套标本。如果24h内报告阴性，则继续采集2-3套血培养。

三、血培养采集规范

采集过程：采集前需手卫生，患者皮肤点选择和消毒，培养瓶的消毒，穿刺将标本注入培养瓶内，颠倒混匀标本与肉汤，以避免血液凝集，2小时内常温送检。

1.培养瓶的消毒：

a)检查瓶子完好无损，未被污染且在有效期内。

b)去掉培养瓶口的塑料瓶盖。

c) 选好穿刺点后，75%乙醇或70%异丙醇消毒，自然干燥60s秒（避免使用碘伏），待用。

2.皮肤消毒

皮肤消毒一步法：推荐使用0.5%葡萄糖酸洗必泰、70%异丙醇作为皮肤消毒剂；

0.5%葡萄糖酸洗必泰作用时间：30s（不适用于2个月内新生儿）；

 70%异丙醇作用时间：自然干燥（适用于2个月内新生儿）  。

皮肤消毒三步法:

a)75%乙醇擦拭静脉穿刺部位，待干30s以上；

b)1-2% 碘酊30秒或1%碘伏消毒60秒，从穿刺点向外画圈消毒,直径>3cm；

c)用75%乙醇消毒 （脱碘），待酒精挥发干燥后采血；

注意：细菌是干死的，不是淹死的

四、采集顺序和套数

血培养宜单独采血，与其他检测项目同时采血时，应先接种血培养瓶，以避免污染。由于抽取厌氧瓶时要避免接触空气，因此使用不同采血针时，采血顺序也不同：

a)蝶翼针：应先穿刺需氧瓶，再穿刺厌氧瓶。(避免血液接触蝶翼针软管死腔内空气)

b)注射器：抽好血后应先注射入厌氧瓶，再注射入需氧瓶。

血量是影响到菌血症检出率的重要因素之一，血量越多，检出率越高，报阳时间越短。血培养量每增加1毫升，成年人真性菌血症阳性检出率增加3％。

a)采集套数：双侧双瓶(指从一个部位采血接种一套培养瓶，再从另一部位采血接种另一套培养瓶。一套血培养瓶包括需氧瓶和厌氧瓶各1个。一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单份血培养。)

b)成人采血量：8-10ml，不少于5ml；儿童采血量：1-3ml（不能超过其总血容量的1%），使用专用血培养瓶。

c)采血量不够时，优先采集需氧瓶。

五、血培养的转运

1)采血后立即常温送检（2小时内），不要冷冻或勒冷藏，低温可能导致对温度敏感的奈瑟氏菌等死亡。。

2)来不及送检的可常温放置，不可放入35 ℃的温箱，温箱可能导致细菌进入生长对数期，从而错过检测的敏感时期，造成仪器判读的假阴性。

亲，血培养的关键知识你get到了吗？